ผลของสารออกฤทธิ์ต่อแคลเซียมในเซลล์ Hilar ที่สังเกตได้จากกล้องจุลทรรศน์คอนโฟคอลสแกนด้วยเลเซอร์
การเปลี่ยนแปลงความเข้มข้นของแคลเซียมที่แตกตัวเป็นไอออนในเซลล์เป็นพื้นฐานของสัญญาณแคลเซียมในฐานะตัวส่งที่สองของการสื่อสารของเซลล์ ดังนั้นจึงเป็นสิ่งสำคัญมากในการวัดความเข้มข้นของแคลเซียมที่แตกตัวเป็นไอออนในเซลล์ในสถานะพักและสถานะเปิดใช้งาน ในอดีต ผู้คนสามารถใช้วิธีไมโครอินเจคชันเพื่อสังเกตแคลเซียมที่แตกตัวเป็นไอออนในเซลล์ขนาดใหญ่ไม่กี่เซลล์เท่านั้น โดยใช้โปรตีนเรืองแสงจากสิ่งมีชีวิต ตัวบ่งชี้การเติมโลหะ ไมโครอิเล็กโทรดแบบคัดเลือก ca' และวิธีการอื่นๆ นับตั้งแต่ทศวรรษ 1980 ที่มีการผสานการใช้ตัวบ่งชี้ฟลูออเรสเซนต์เฉพาะของ ca2' และโฟโตมิเตอร์ไมโครฟลูออเรสเซนซ์เข้าด้วยกัน ผู้คนจึงเริ่มศึกษาสัญญาณ "ca" ผ่านทางวิธีการกำหนดโซเดียม (: az' แบบไร้เซลล์) จนกระทั่งเมื่อเร็ว ๆ นี้ การใช้กล้องจุลทรรศน์คอนโฟคอลสแกนด้วยเลเซอร์ได้แพร่หลายอย่างมาก เร่งการวิจัยของผู้คนเกี่ยวกับแคลเซียมที่แตกตัวเป็นไอออนในเซลล์เดี่ยวและการกระจายตัวของเซลล์ย่อย การใช้กล้องจุลทรรศน์คอนโฟคอลสแกนด้วยเลเซอร์ของ Leica และตัวบ่งชี้เรืองแสงเฉพาะ ca" f1Mo-3 ทำให้สามารถสังเกตผลกระทบของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพต่างๆ ต่อแคลเซียมที่แตกตัวเป็นไอออนใน 1.เซลล์ไอ-พีเอ็น
เซลล์ c-PK1 บน I เป็นเซลล์ไลน์ที่ได้มาจาก tubule ไตหมู 1: ผิวหนัง ซึ่งได้รับการยอมรับจากชุมชนวิชาการนานาชาติ มีฟังก์ชันการขนส่งบางอย่างร่วมกับเยื่อบุผิว tubule ส่วนใกล้เคียง แต่การตอบสนองต่อสิ่งเร้าก็คล้ายคลึงกับการตอบสนองต่อแขนขาที่หนาขึ้นของไฮนซ์มิกซ์ ดังนั้นเซลล์ PR1 บน N จึงมักจะใช้แทนเซลล์เยื่อบุผิว tubule ใกล้เคียงเพื่อศึกษาการขนส่งของสาร และแทนที่จะใช้ไฮนซ์ผสมกับเซลล์เยื่อบุผิวส่วนวัฒนธรรมเพื่อศึกษาการตอบสนองต่อฮอร์โมน ยังมีผู้คนในโลกที่ใช้เซลล์ I'I'c-PK1 เพื่อศึกษาสารส่งแคลเซียมภายในเซลล์ในเซลล์เยื่อบุผิวท่อไต u, เซลล์ c—PK1 แลกเปลี่ยนแคลเซียมในเซลล์ทั้งหมด 50 เปอร์เซ็นต์กับโลกภายนอกภายในระยะ 20 มม. และแคลเซียมในเซลล์ที่เหลือแลกเปลี่ยนกับโลกภายนอกในเชิงรุกมากขึ้น ซึ่งเรียกว่าแหล่งแลกเปลี่ยนแคลเซียมที่ถูกบุกรุก ในนิวเคลียส อุปกรณ์ Golgi และบริเวณอื่นๆ ของไซโตพลาสซึม มีสองส่วนคือ แหล่งแคลเซียมที่แลกเปลี่ยนอย่างรวดเร็ว และแหล่งแคลเซียมที่แลกเปลี่ยนช้า
